Комплексная фенотипическая оценка селекционных форм и линий озимого рапса, содержащих факторы цитоплазматической мужской стерильности

Представлены результаты изучения цитоплазматической мужской стерильности (ЦМС) рапса озимого (Brassica napus ibernalis L.). С использованием гистологических, морфобиологических и биохимических методов выделено 12 линий закрепителей стерильности для ЦМС типа Ogura; а также 2 линии для ЦМС Ogura и 1 для ЦМС Polima со 100 %-ной восстанавливающей способностью. Проведена оценка комбинационной способности более 20 материнских родительских ЦМС линий и получено свыше 500 экспериментальных простых стерильных и восстановленных гибридов на основе ЦМС типа Ogura. С использованием культуры in vitro получены удвоенные гаплоиды родительских линий рапса озимого, установлены особенности протекания процессов эмбриоидогенеза, морфогенеза и ризогенеза.  

1. Пилюк, Я. Э. Научные основы селекции и технологии возделывания рапса (Brаssica nаpus oleifera Metzg.) в Беларуси / Я. Э. Пилюк. – Минск, 2021. – 80 с.

2. Fu, T. D. Discovery, study and utilisation of polima CMS in Brassica napus / T. D. Fu // Progr. Natl. Scien. – 1995. – N 5. – P. 169–177.

3. Горлов, С. Л. Селекция озимого рапса (Brassica napus) на гетерозис / С. Л. Горлов. – Краснодар, 1995. – 70 с.

4. Prakash, S. Cytoplasmic male sterility (CMS) systems either than ogu and polima in Brassica: current status / S. Prakash, P. B. Kirti, V. L. Chopra // 9 th International Rapeseed Congress. Cambridge, UK. – 1995. – Vol. 1. – P. 44–48.

5. Popławska, W. Genetic and breeding evaluation of doubled haploid lines with restorer gene for CMS ogura system of winter oilseed rape (Brassica napus L.) / W. Popławska, I. Bartkowiak-Broda, L. Szała // Brassica. – 2007. – Vol. 9, N 1–4. – P. 29–32.

6. Laser, K. D. Anatomy and cytology of microsporogenesis in cytoplasmic male sterile angiosperms / K. D. Laser, N. R. Lersten // Bot. Rev. – 1972. – Vol. 38. – P. 425–454. https://doi.org/10.1007/bf02860010

7. Kaul, M. L. H. Sterility in higher plants (Monographs on theoretical and applied genetics) / M. L. H. Kaul. – Berlin, Heidelberg, New York, London, Paris, Tokyo, 1988. – 1005 p.

8. Котлярова, Е. Б. Аспекты применения методов биотехнологии в селекции ярового рапса (Brassica napus L.) / Е. Б. Котлярова. – Липецк, 2007. – 22 с.

9. Mishra, R. In vitro androgenesis in rice: adventages, constraints and future prospects / R. Mishra, G. J. N. Rao // Rice Sci. – 2016. – Vol. 23, N 2. – P. 57–68. https://doi.org/10.1016/j.rsci.2016.02.001

10. Доспехов, Б. А. Методика полевого опыта / Б. А. Доспехов. – М., 1985. – 351 с.

11. Методические указания по изучению мировой коллекции масличных культур / ВИР. – СПб., 1976. – 23 с.

12. Методика государственного сортоиспытания сельскохозяйственных культур / под ред. М. А. Федина. – М., 1988. – 121 с.

13. Паушева, З. П. Практикум по цитологии растений / З. П. Паушева. – М., 1980. – 301 с.

14. Keller, W. A. High frequency of microspore-derived plants from Brassica napus anther cultures / W. A. Keller, K. C. Armstrong // Z. Pflanzen-zuchtg. – 1978. – Vol. 80. – P. 100–108.

15. Марченко, Л. Н. Качество масла и пути его улучшения в процессе селекции масличных крестоцветных / Л. Н. Марченко // Селекция и семеноводство масличных культур: сб. науч. работ / ВНИИМК. – Краснодар, 1980. – С. 107–114.