Preview

Доклады Национальной академии наук Беларуси

Расширенный поиск

СВЯЗЫВАНИЕ ГЕЛЕВЫХ МАГНИТНЫХ МИКРОСФЕР С МОНОНУКЛЕАРНЫМИ КЛЕТКАМИ КРОВИ

Полный текст:

Аннотация

Покрытие поливиниловым спиртом (ПВС) магнитных микросфер (ММС) на основе хитозана, сшитого глутаральдегидом, уменьшает их неспецифическое связывание с мононуклеарными клетками крови (МНК) эффективнее, чем покрытие карбоксиметилдекстраном со степенью карбоксилирования <10 %. Поливинилспиртовые ММС, покрытые дополнительным слоем ПВС после сшивки глутаральдегидом, в т. ч. функционализованные карбоксильными группами благодаря обработке H2O2, характеризуются низким неспецифическим связыванием с МНК. В осадке после магнитной сепарации на одну клетку приходится 4670 ± 760 поливинилспиртовых ММС, обработанных 4 % H2O2, а коммерческих ММС MagnosphereTM MS300/Carboxyl – 2040 ± 400.

Об авторах

К. В. ЛАЗНЕВ
Институт химии новых материалов НАН Беларуси, Минск
Беларусь


В. Е. АГАБЕКОВ
Институт химии новых материалов НАН Беларуси, Минск
Беларусь
академик


Список литературы

1. Plouffe, B. D. Fundamentals and application of magnetic particles in cell isolation and enrichment: a review / B. D. Plouffe, S. K. Murthy, L. H. Lewis // Rep. Prog. Phys. – 2015. – Vol. 78, N 1. – P. 016601. – doi: 10.1088/0034- 4885/78/1/016601.

2. Salmaso, S. Stealth properties to improve therapeutic efficacy of drug nanocarriers / S. Salmaso, P. Caliceti // J. Drug. Deliv. – 2013. – Vol. 2013. – Аrticle ID 374252.

3. A biotechnological perspective on the application of iron oxide magnetic colloids modified with polysaccharides / A. M. G. C. Dias [et al.] // Biotechnology Advances. – 2011. – Vol. 29. – P. 142–155.

4. Hermanson, G. T. Bioconjugate Techniques / G. T. Hermanson. – 2nd ed. – Elsevier, 2008.

5. Self-assembled monolayers with different terminating groups as model substrates for cell adhesion studies / N. Faucheux [et al.] // Biomaterials. – 2004. – Vol. 25. – P. 2721–2730.

6. Influence of Co amount on the efficiency of energy absorption of Fe-Co ferrite nanoparticles / K. A. Kekalo [et al.] // J. Magn. Magn. Mater. – 2009. – Vol. 321. – P. 1514–1516.

7. Gelatin nanoparticles by two-step desolvation – a new preparation method, surface modifications and cell uptake / C. J. Coester [et al.] // J. Microencapsul. – 2000. – Vol. 17. – P. 187–193.

8. Panda, S. K. Isolation of Human PBMCs / S. K. Panda, B. Ravindran // Bio-protocol 3(3): e323. – 2013 [Electronic resource]. – Mode of access: http://www.bio-protocol.org/e323.

9. Tamai, T. Effect of cross-linking on polymer diffusion in poly(butylmethacrylate-co-butyl acrylate) latex films / T. Tamai, P. Pinenq, M. A. Winnik // Macromolecules. – 1999. – Vol. 32. – P. 6102–6110.

10. Effect of surface charge on the colloidal stability and in vitro uptake of carboxymethyl dextran-coated iron oxide nanoparticles / V. Ayala [et al.] // J. Nanopart. Res. – 2013. – Vol. 15, N 8. – P. 1874.

11. Polyvinyl alcohol-glutaraldehyde network as a support for protein immobilisation / A. M. Araujo [et al.] // Biotechnology Techniques. – 1997. – Vol. 1, N 2. – Р. 67–70.

12. Gillies, E. R. Acetals as pH-sensitive linkages for drug delivery / E. R. Gillies, A. P. Goodwin, J. M. J. Frechet // Bioconjugate Chem. – 2004. – Vol. 15. – P. 1254–1263.

13. Glutaraldehyde: behavior in aqueous solution, reaction with proteins, and application to enzyme crosslinking / I. Migneault [et al.] // BioTechniques. – 2004. – Vol. 37. – P. 790–802.

14. Hydrogen peroxide oxidation of aldehydes to carboxylic acids: an organic solvent-, halide- and metal-free procedure / K. Sato [et al.] // Tetrahedron Letters. – 2000. – Vol. 41, N 9. – P. 1439–1442.

15. Surface chemistry and polymer film thickness effects on endothelial cell adhesion and proliferation / D. Bhattacharyya [et al.] // Biomed. Mater. Res. A. – 2010. – Vol. 94. – P. 640–648.


Просмотров: 354


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1561-8323 (Print)
ISSN 2524-2431 (Online)