Оценка эффективности защиты от ультрафиолетового излучения экстрактами лишайника Hypogymnia physodes в биологических системах in vivo

Оценены in vivo реактивность биологических систем на воздействие УФ-А/Б и фотозащитный потенциал кожных аппликаций лишайниковых экстрактов Hypogymnia physodes по биохимическим показателям крови и морфометрическим параметрам кожи у лабораторных мышей. Этанольный, ацетоновые и гексан-ацетоновый экстракты (1 % в диметилсульфоксиде) эффективно поглощают диапазон УФ с наибольшей индукцией эритемы. На 4-е сутки после облучения УФ-А/Б наблюдаются выра женные бурые ожоги кожи спины, сильная эритема и отеки, образование струпа. В сыворотке крови значимо изменяются биохимические параметры – повышаются прооксидантная емкость, уровень нитрат- и нитрит-ионов NOx, окислительно модифицированных протеинов АОРР, активность глутатионпероксидазы GPx, снижается уровень SH-групп. Растворы экстрактов (5 %) в диметилсульфоксиде в разной степени проявляют фотопротекторное действие: морфологически – в минимизации отеков, эритемы, струпа; биохимически – в регуляции указанных параметров на уровне контроля. По совокупности биохимических и морфометрических па раметров наиболее перспективными фотопротекторами проявили себя ацетоновые экстракты. Прооксидантная емкость, GPx, АОРР (во всех случаях снижаются) и NOx показали неспецифичность и довольно высокую чувствительность и больше пригодны для оценки воспалительных и окислительных процессов. Наибольшую эффектив ность и адекватность поставленным задачам показал уровень протеиновых SH-групп.

ультрафиолетовое излучение, фотопротекторы, Hypogymnia physodes, прооксидантная емкость, глутатион, окислительная модификация протеинов

1. Хлебникова, А. Н. Дерматологические аспекты действия инсоляции / А. Н. Хлебникова // Дерматология. – 2009. – № 2. – С. 38–42.

2. Акимов, В. Г. Биологические эффекты ультрафиолетового облучения кожи / В. Г. Акимов // Вестн. дерматологии и венерологии. – 2008. – № 3. – С. 81–84.

3. Epstein, J. H. Photocarcinogenesis, skin cancer, and aging / J. H. Epstein // J. Am. Acad. Dermatol. – 1983. – Vol. 9, N 4. – Р. 487–502. https://doi.org/10.1016/s0190-9622(83)70160-x

4. Cellular effects of long wavelength UV light (UVA) in mammalian cells / T. J. McMillan [et al.] // J. Pharm. Pharmacol. – 2008. – Vol. 60, N 8. – Р. 969–976. https://doi.org/10.1211/jpp.60.8.0004

5. Pentland, A. P. Active oxygen mechanisms of UV inflammation / A. P. Pentland // Free Radicals in Diagnostic Medicine. – 1994. – Vol. 366. – P. 87–97. https://doi.org/10.1007/978-1-4615-1833-4_7

6. Intrinsic aging vsphotoaging: a comparative histopathological, immunohistochemical, and ultrastructural study of skin / M. El-Domyati [et al.] // Exp. Dermatol. – 2002. – Vol. 11, N 5. – P. 398–405. https://doi.org/10.1034/j.1600-0625.2002.110502.x

7. Galun, M. Secondary metabolic products / M. Galun, A. Shomer-Ilan // CRC handbook of lichenology. – FL, 1988. – Vol. 3: CRC. – P. 3–8.

8. Ramya, K. Lichens: A myriad hue of Bioresources with medicinal properties / K. Ramya, T. Thiyagarajan // International Journal of Life Sciences. – 2017. – Vol. 5, N 3. – P. 387–393.

9. Rankovic, B. Lichen secondary metabolites: Bioactive Properties and Pharmaceutical Potential / B. Rankovic. – Switzerland, 2015. – 206 p. https://doi.org/10.1007/978-3-319-13374-4

10. Mehdi, M. M. N,N-Dimethyl-p-phenylenediamine dihydrochloride-based method for the measurement of plasma oxidative capacity during human aging / M. M. Mehdi, S. I. Rizvi // Anal. Biochem. – 2013. – Vol. 436, N 2. – P. 165–167. https://doi.org/10.1016/j.ab.2013.01.032

11. Современные проблемы биохимии. Методы исследований / Е. В. Барковский [и др.]. – Минск: Вышэйшая школа, 2013. – С. 187–190.

12. Nitric Oxide and Interleukin-6 Production in Patients with Transient Cerebral Microcirculatory Disturbances / M. N. Starodubtseva [et al.] // American Journal of Clinical Neurology and Neurosurgery. – 2015. – Vol. 1, N 2. – P. 86–91.

13. Optimisation of an advanced oxidation protein products assay: Its application to studies of oxidative stress in diabetes mellitus / E. L. Taylor [et al.] // Oxidative Medicine and Cellular Longevity. – 2015. – Vol. 2015, art. 496271. – 10 p. https://doi.org/10.1155/2015/496271

14. Oxidative damage to plasma proteins in patients with chronic alcohol dependence: the effect of smoking / E. Kapaki [et al.] // In Vivo. – 2007. – Vol. 21, N 3. – P. 523–528.

15. Oxidative modification of serum proteins in multiple sclerosis / I. Sadowska-Bartosz [et al.] // Neurochemistry International. – 2013. – Vol. 63, N 5. – P. 507–516. https://doi.org/10.1016/j.neuint.2013.08.009

16. Subcellular compartmentalization of glutathione: Correlations with parameters of oxidative stress related to genotoxicity / R. M. Green [et al.] // Mutagenesis. – 2006. – Vol. 21, N 6. – P. 383–390. https://doi.org/10.1093/mutage/gel043