Дифференциальная экспрессия генов люпина желтого при инфицировании изолятами возбудителя антракноза
https://doi.org/10.29235/1561-8323-2021-65-3-330-336
Аннотация
Изучена дифференциальная экспрессия генов у проростков люпина желтого, обработанных суспензией спор возбудителя антракноза Colletotrichum lupini. В результате анализа SRAP-профилей выявлены ПЦР- фрагменты, присутствующие у образцов, демонстрирующих устойчивость к патогену. Соответствующие им генетические детерминанты, вероятно, участвуют в обеспечении устойчивости (толерантности) растений люпина к антракнозу.
Об авторах
Е. Н. Сысолятин
Институт генетики и цитологии Национальной академии наук Беларуси
Беларусь
Беларусь
Сысолятин Евгений Николаевич – мл. науч. сотрудник
ул. Академическая, 27, 220072, Минск, Республика Беларусь
В. С. Анохина
Белорусский государственный университет
Беларусь
Беларусь
Анохина Вера Степановна – канд. биол. наук, доцент
пр. Независимости, 4, 220004, Минск, Республика Беларусь
Н. В. Анисимова
Институт генетики и цитологии Национальной академии наук Беларуси
Беларусь
Беларусь
Анисимова Наталья Владимировна – канд. биол. наук, ст. науч. сотрудник
ул. Академическая, 27, 220072, Минск, Республика Беларусь
О. Г. Бабак
Институт генетики и цитологии Национальной академии наук Беларуси
Беларусь
Беларусь
Бабак Ольга Геннадьевна – канд. биол. наук, доцент, вед. науч. сотрудник
ул. Академическая, 27, 220072, Минск, Республика Беларусь
А. В. Кильчевский
Институт генетики и цитологии Национальной академии наук Беларуси
Беларусь
Беларусь
Кильчевский Александр Владимирович – академик, д-р биол. наук, профессор, научный руководитель лаборатории
ул. Академическая, 27, 220072, Минск, Республика Беларусь
Список литературы
1. Glencross, B. Assessment of the nutritional variability of lupins as an aquaculture feed ingredient: Final Report for the Grains Research Committee of WA Project Fisheries Research Contract Report No. 6. Department of Fisheries / B. Glencross, J. Curnow, W. Hawkins. – Western Australia, 2003. – 44 p.
2. Evaluation of dietary inclusion of yellow lupin (Lupinus luteus) kernel meal on the growth, feed utilisation and tissue histology of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) / B. Glencross [et al.] // Aquaculture. – 2004. – Vol. 235, N 1–4. – P. 411– 422. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2003.09.022
3. Proteomic characterization of seeds from yellow lupin (Lupinus luteus L) / T. Ogura [et al.] // Proteomics. – 2014. – Vol. 14, N 12. – P. 1543–1554. https://doi.org/10.1002/pmic.201300511
4. Identification of anthracnose resistance in yellow lupin (Lupinus luteus L.) and its incorporation into breeding lines / K. N. Adhikari [et al.] // Plant Breed. – 2011. – Vol. 130, N 6. – P. 660–664. https://doi.org/10.1111/j.1439-0523.2011.01880.x
5. Купцов, Н. С. Основные результаты селекции видов люпина в Беларуси и очередные этапы их доместикации / Н. С. Купцов, Т. П. Миронова // Генетика и биотехнология XXI века. Фундаментальные и прикладные аспекты: материалы Междунар. науч. конф. – Минск, 2008. – С. 119–120.
6. Development of microsatellite markers in Lupinus luteus (Fabaceae) and cross-species amplification in other lupine species / L. Gonzalez [et al.] // American Journal of Botany. – 2010. – Vol. 97, N 8. – P. e72–e74. https://doi.org/10.3732/ajb.1000170
7. Yellow lupin (Lupinus luteus L.) transcriptome sequencing: molecular marker development and comparative studies / L. B. Parra-González [et al.] // BMC Genomics. – 2012. – Vol. 13, N 1. – P. 425. https://doi.org/10.1186/1471-2164-13-425
8. Development and characterization of InDel markers for Lupinus luteus L. (Fabaceae) and cross-species amplification in other Lupin species / C. E. Osorio [et al.] // Electron. J. Biotechn. – 2018. – Vol. 31. – P. 44–47. https://doi.org/10.1016/j.ejbt.2017.11.002
9. Genetic and comparative mapping of Lupinus luteus L. highlight syntenic regions with major orthologous genes controlling anthracnose resistance and flowering time / N. Lichtin [et al.] // Sci. Rep. – 2020. – Vol. 10, N 1. – Art. 19174. https://doi.org/10.1038/s41598-020-76197-w
10. Li, G. Sequence-related amplifed polymorphism (SRAP), a new marker system based on a simple PCR reaction: its application to mapping and gene tagging in Brassica / G. Li, C. F. Quiros // Theor. Appl. Genet. – 2001. – Vol. 103, N 2–3. – P. 455–461. https://doi.org/10.1007/s001220100570
11. Development of SRAP, SRAP-RGA, RAPD and SCAR markers linked with a Fusarium wilt resistance gene in eggplant / N. Mutlu [et al.] // Theor. Appl. Genet. – 2008. – Vol. 117, N 8. – P. 1303–1312. https://doi.org/10.1007/s00122-008-0864-6
12. Ma, J.-X. Genetic diversity of wild Medicago sativa by sequence-related amplified polymorphism markers in Xingjiang region, China / J.-X. Ma, T.-M. Wang, X.-S. Lu // Pakistan Journal of Botany. – 2013. – Vol. 45, N 6. – P. 2043–2050.
13. CDD/SPARCLE: the conserved domain database in 2020 / S. Lu [et al.] // Nucleic Acids Res. – 2020. – Vol. 48, N D1. – P. D265–D268. https://doi.org/10.1093/nar/gkz991
14. Биологический энциклопедический словарь / М. С. Гиляров [и др.]. – 2-е изд. – М., 1986. – 864 с.
Рецензия
Просмотров: 584
Послать статью по эл. почте 