Дифференциальная экспрессия генов люпина желтого при инфицировании изолятами возбудителя антракноза
https://doi.org/10.29235/1561-8323-2021-65-3-330-336
Анатацыя
Изучена дифференциальная экспрессия генов у проростков люпина желтого, обработанных суспензией спор возбудителя антракноза Colletotrichum lupini. В результате анализа SRAP-профилей выявлены ПЦР- фрагменты, присутствующие у образцов, демонстрирующих устойчивость к патогену. Соответствующие им генетические детерминанты, вероятно, участвуют в обеспечении устойчивости (толерантности) растений люпина к антракнозу.
Аб аўтарах
Е. СысолятинБеларусь
В. Анохина
Беларусь
Н. Анисимова
Беларусь
О. Бабак
Беларусь
А. Кильчевский
Беларусь
Спіс літаратуры
1. Glencross, B. Assessment of the nutritional variability of lupins as an aquaculture feed ingredient: Final Report for the Grains Research Committee of WA Project Fisheries Research Contract Report No. 6. Department of Fisheries / B. Glencross, J. Curnow, W. Hawkins. – Western Australia, 2003. – 44 p.
2. Evaluation of dietary inclusion of yellow lupin (Lupinus luteus) kernel meal on the growth, feed utilisation and tissue histology of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) / B. Glencross [et al.] // Aquaculture. – 2004. – Vol. 235, N 1–4. – P. 411– 422. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2003.09.022
3. Proteomic characterization of seeds from yellow lupin (Lupinus luteus L) / T. Ogura [et al.] // Proteomics. – 2014. – Vol. 14, N 12. – P. 1543–1554. https://doi.org/10.1002/pmic.201300511
4. Identification of anthracnose resistance in yellow lupin (Lupinus luteus L.) and its incorporation into breeding lines / K. N. Adhikari [et al.] // Plant Breed. – 2011. – Vol. 130, N 6. – P. 660–664. https://doi.org/10.1111/j.1439-0523.2011.01880.x
5. Купцов, Н. С. Основные результаты селекции видов люпина в Беларуси и очередные этапы их доместикации / Н. С. Купцов, Т. П. Миронова // Генетика и биотехнология XXI века. Фундаментальные и прикладные аспекты: материалы Междунар. науч. конф. – Минск, 2008. – С. 119–120.
6. Development of microsatellite markers in Lupinus luteus (Fabaceae) and cross-species amplification in other lupine species / L. Gonzalez [et al.] // American Journal of Botany. – 2010. – Vol. 97, N 8. – P. e72–e74. https://doi.org/10.3732/ajb.1000170
7. Yellow lupin (Lupinus luteus L.) transcriptome sequencing: molecular marker development and comparative studies / L. B. Parra-González [et al.] // BMC Genomics. – 2012. – Vol. 13, N 1. – P. 425. https://doi.org/10.1186/1471-2164-13-425
8. Development and characterization of InDel markers for Lupinus luteus L. (Fabaceae) and cross-species amplification in other Lupin species / C. E. Osorio [et al.] // Electron. J. Biotechn. – 2018. – Vol. 31. – P. 44–47. https://doi.org/10.1016/j.ejbt.2017.11.002
9. Genetic and comparative mapping of Lupinus luteus L. highlight syntenic regions with major orthologous genes controlling anthracnose resistance and flowering time / N. Lichtin [et al.] // Sci. Rep. – 2020. – Vol. 10, N 1. – Art. 19174. https://doi.org/10.1038/s41598-020-76197-w
10. Li, G. Sequence-related amplifed polymorphism (SRAP), a new marker system based on a simple PCR reaction: its application to mapping and gene tagging in Brassica / G. Li, C. F. Quiros // Theor. Appl. Genet. – 2001. – Vol. 103, N 2–3. – P. 455–461. https://doi.org/10.1007/s001220100570
11. Development of SRAP, SRAP-RGA, RAPD and SCAR markers linked with a Fusarium wilt resistance gene in eggplant / N. Mutlu [et al.] // Theor. Appl. Genet. – 2008. – Vol. 117, N 8. – P. 1303–1312. https://doi.org/10.1007/s00122-008-0864-6
12. Ma, J.-X. Genetic diversity of wild Medicago sativa by sequence-related amplified polymorphism markers in Xingjiang region, China / J.-X. Ma, T.-M. Wang, X.-S. Lu // Pakistan Journal of Botany. – 2013. – Vol. 45, N 6. – P. 2043–2050.
13. CDD/SPARCLE: the conserved domain database in 2020 / S. Lu [et al.] // Nucleic Acids Res. – 2020. – Vol. 48, N D1. – P. D265–D268. https://doi.org/10.1093/nar/gkz991
14. Биологический энциклопедический словарь / М. С. Гиляров [и др.]. – 2-е изд. – М., 1986. – 864 с.