Получение цельноорганного скаффолда печени крысы
https://doi.org/10.29235/1561-8323-2021-65-4-448-455
Анатацыя
Получение трехмерного скаффолда открывает широкие перспективы для инженерии биоискусственных органов. В работе представлен метод перфузионной децеллюляризации печени крысы с анализом основных проблем и вариантов их решения. Перфузия донорской печени 0,1 %-ным раствором додецилсульфата натрия (SDS) позволяет получить качественный бесклеточный матрикс, характеризующийся сохранностью печеночной архитектоники, проходимостью сосудистого русла, остаточной ДНК менее 1 %, отсутствием признаков деструкции коллагеновых волокон и тканевого отека. Полученный предложенным методом скаффолд может использоваться для рецеллюляризации аллогенными клеточными культурами при создании объемных тканеинженерных конструкций.
Аб аўтарах
А. Дубко
Международный государственный экологический институт им. А. Д. Сахарова Белорусского государственного университета
Беларусь
Беларусь
М. Юркевич
Международный государственный экологический институт им. А. Д. Сахарова Белорусского государственного университета
Беларусь
Беларусь
М. Лобай
Международный государственный экологический институт им. А. Д. Сахарова Белорусского государственного университета
Беларусь
Беларусь
А. Свирская
Международный государственный экологический институт им. А. Д. Сахарова Белорусского государственного университета
Беларусь
Беларусь
Н. Юханов
Республиканский научно-практический центр детской онкологии, гематологии и иммунологии
Беларусь
Беларусь
Т. Савицкая
Республиканский научно-практический центр детской онкологии, гематологии и иммунологии
Беларусь
Беларусь
Д. Нижегородова
Международный государственный экологический институт им. А. Д. Сахарова Белорусского государственного университета
Беларусь
Беларусь
М. Зафранская
Международный государственный экологический институт им. А. Д. Сахарова Белорусского государственного университета
Беларусь
Беларусь
Спіс літаратуры
1. Tissue engineering in liver regenerative medicine: insights into novel translational technologies / Z. Heydari [et al.] // Cells. – 2020. – Vol. 9, N 2. – P. 304. https://doi.org/10.3390/cells9020304
2. Concise review: Liver regenerative medicine: From hepatocyte transplantation to bioartificial livers and bioengineered grafts / C. T. Nicolas [et al.] // Stem Cells. – 2017. – Vol. 35, N 1. – P. 42–50. https://doi.org/10.1002/stem.2500
3. Hamooda, M. Hepatocyte transplantation in children with liver cell failure / M. Hamooda // Electron Physician. – 2016. – Vol. 8, N 10. – P. 3096–3101. https://doi.org/10.19082/3096
4. Monitoring of intrasplenic hepatocyte transplantation for acute-on-chronic liver failure: a prospective five-year followup study / F. Wang [et al.] // Transplantation Proceeding. – 2014. – Vol. 46, N 1. – P. 192–198. https://doi.org/10.1016/j.transproceed.2013.10.042
5. Mesenchymal stromal cell therapy for liver diseases / M. Alfaifi [et al.] // Journal of Hepatology. – 2018. – Vol. 68, N 6. – P. 1272–1285. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2018.01.030
6. A review of three-dimensional printing in tissue engineering / N. A. Sears [et al.] // Tissue Eng. B Rev. – 2016. – Vol. 22, N 4. – P. 298–310. https://doi.org/10.1089/ten.teb.2015.0464
7. Современные возможности регенеративной медицины: биофабрикация полых органов / Е. С. Евстратова [и др.] // Вестн. трансплантологии и искусственных органов. – 2019. – Т. 21, № 2. – С. 92–103. https://doi.org/10.15825/1995-1191-2019-2-92-103
8. 3D cultivation technique for primary human hepatocytes / А. Bachman [et al.] // Microarrays. – 2015. – Vol. 4, N 1. – P. 64–83. https://doi.org/10.3390/microarrays4010064
9. Liver tissue engineering: from implantable tissue to whole organ engineering / G. Mazza [et al.] // Hepatology Communications. – 2018. – Vol. 2, N 2. – P. 131–141. https://doi.org/10.1002/hep4.1136
10. Novel morphological multi-scale evaluation system for quality assessment of decellularized liver scaffolds / V. Moulisová [et al.] // Journal of Tissue Engineering. – 2020. – Vol. 11. – P. 1–14. https://doi.org/10.1177/2041731420921121
11. Gilpin, A. Decellularization Strategies for Regenerative Medicine: From Processing Techniques to Applications / A. Gilpin, Yang Y. // BioMed Research International. – 2017. – P. 1–13. https://doi.org/10.1155/2017/9831534
12. Decellularization and solubilization of porcine liver for use as a substrate for porcine hepatocyte culture: method optimization and comparison / R. E. Coronado [et al.] // Cell Transplantation. – 2017. – Vol. 26, N 12. – P. 1840–1854. https://doi.org/10.1177/0963689717742157
13. Recent advanced in decellularization and recellularization for tissue-engineered liver grafts / Y. Wang [et al.] // Cell Tissue Organs. – 2017. – Vol. 204, N 3–4. – P. 125–136. https://doi.org/10.1159/000479597
14. Tissue-Specific Decellularization Methods: Rationale and Strategies to Achieve Regenerative Compounds / U. Mendibil [et al.] // Int. J. Mol. Sci. – 2020. – Vol. 21, N 15. – P. 5447. https://doi.org/10.3390/ijms21155447
15. Biocompatibility evaluation of tissue-engineered decellularized scaffolds for biomedical application / K. H. Hussein [et al.] // Materials Science and Engineering. – 2016. – N 67. – P. 766–778. https://doi.org/10.1016/j.msec.2016.05.068
##reviewer.review.form##
Праглядаў: 715
Паслаць артыкул па эл. пошце 